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斑马鱼人源肿瘤移植模型构建之肿瘤细胞体内增殖情况分析

斑马鱼人源肿瘤移植模型构建之肿瘤细胞体内增殖情况分析

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产品名称: 斑马鱼人源肿瘤移植模型构建之肿瘤细胞体内增殖情况分析

英文名称: CRISPR/Cas9

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斑马鱼人源肿瘤移植模型构建之肿瘤细胞体内增殖情况分析

斑马鱼人类肿瘤移植模型,近年来已逐渐成为一种新型的体内肿瘤移植模型。和传统的小鼠人癌移植模型具有省时、省力、成本低和可靠性高等优点,特
别适合临床前药效学评和早期抗癌药物筛选。

应用案例:

利用斑马鱼人源肿瘤移植模型,进行不同放化疗方案抗肿瘤效果分析,通过分析移植后1dpf3dpf的荧光情况,得到CG/DOX+5GY组对肿瘤杀伤显

著高于其他组,实验周期不到1周。

使用(ENU)或(MNNG)诱导斑马鱼在不同部位形成肿瘤。

将红色荧光标记的人类肿瘤细胞采用显微注射的方式移植到透明斑马鱼体内,可实时快速监测肿瘤的生长和转移。

利用斑马鱼肿瘤移植模型,可以快速进行肿瘤大小生长定量和转移的肿瘤组织灶定量。

免疫缺陷透明斑马鱼模型,可以清晰地看到肿瘤生长情况。

流程图:

肿瘤细胞培养,斑马鱼胚胎收集--肿瘤移植(2 dpf的鱼苗进行卵黄囊部位荧光染色后的肿瘤细胞注射)--初始荧光拍照(50hpf(2 hpi)注射后2小时的

鱼苗进行整体荧光拍照并单孔培养)--药物处理2--处理后荧光拍照(4 dpf (2 dpi) 的鱼苗进行整体荧光拍照并单孔培养(有效数据3*5以上) )。-

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数据处理(肿瘤面积/肿瘤细胞生存情况统计)

肿瘤细胞体内转移情况分析

项目流程:

肿瘤细胞培养,斑马鱼胚胎收集--肿瘤移植(2 dpf的鱼苗进行卵黄囊部位荧光染色后的肿瘤细胞注射)--初始荧光拍照(50hpf(2 hpi)注射后2小时的

鱼苗进行整体荧光拍照并单孔培养)--药物处理2--处理后荧光拍照(4 dpf (2 dpi) 的鱼苗进行整体荧光拍照并单孔培养(有效数据3*5以上) )。-

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数据处理(肿瘤面积/肿瘤细胞生存情况统计)

应用案例:

分析CAR-TRaji细胞的转移灶杀伤效果,通过卵黄囊间隙显微注射,构建人源肿瘤移植模型,实验组同时注射CAR-T细胞,注射后24h,分析斑马鱼

头部,躯干和尾部的肿瘤荧光面积,可见对转移到斑马鱼头部,躯干和尾部的Raji细胞杀伤效果显著。

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