正式测定前取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
植物花色苷测试盒测定意义：
花色苷是一类易溶于极性溶剂的天然色素，属黄酮类化合物。花色苷广泛存在于植物的根、
茎、叶、花和果实中，使其呈现由红到紫等不同颜色，是植物主要的呈色物质。
测定原理：
采用 pH 示差法测定花色苷含量，当 pH 为 1.0 时花色苷在 530nm 处有最大吸收峰,而当 pH
为 4.5 时,花色苷转变为无色查尔酮形式,在 530 处无吸收峰, 利用此特性分别测定在不同
pH 下的 530nm 和 700nm 处的吸光度值。pH 示差法减少了溶液 pH 和溶剂差异的影响，排除了
其他非花色苷类物质对检测结果的干扰。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计/酶标仪、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研钵和蒸馏水。
试剂的组成和配制：
提取液：液体 100 mL× 1 瓶，4℃保存；
试剂一：液体 20 mL× 1 瓶，4℃保存；
试剂二：液体 20 mL × 1 瓶，4℃保存；
花色苷的提取：
按照烘干样品质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 烘干样品，
加入 1mL 提取液），充分匀浆后转移到 EP 管中，提取液定容至 1 mL，盖紧后 4℃浸提 24 h，
8000 g，常温离心 10 min，取上清液待测。
测定步骤：
1、分光光度计或酶标仪预热 30min 以上；试剂一和试剂二预热 10min 以上；
2、取 20 µL 上清液和 180 µL 试剂一（相当于稀释 10 倍），静置 15min，分别测定 530nm 和
700nm 处的吸光值，分别记为 A1 和 A2。
3、 取 20 µL 上清液和 180 µL 试剂二（相当于稀释 10 倍），静置 15min，分别测定 530nm
和 700nm 处的吸光值，分别记为 A3 和 A4。
4、 计算△A=(A1-A2)-(A3-A4)
注意：如果A1大于1，可以适当加大稀释倍数，保证总体积200 µL不变，如10 µL上清液和
190 µL试剂一（相当于稀释20倍）；如果A1小于0.1，可以适当缩小稀释倍数，保证总体积不
变，如100 µL上清液和100 µL试剂一（相当于稀释2倍），使A1保持在0.1~1范围内，可提高
检测灵敏度；同样调整上清液和试剂二体积比例；计算时以实际稀释倍数代入下述公式中。
花色苷含量计算：
a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下
花色苷含量（µg/g 干重）=[ΔA×V÷（ε×d）×M×F×106
]÷W=16.7×ΔA× F÷W
V：提取液体积，1×10-3
L；ε：花色苷的摩尔消光系数，2.69×104
L / mol /cm；d：比色皿光
径，1cm；M：花色苷的相对分子质量：449.2g/mol；F：稀释倍数；106：1g=106
µg；W：样
本干重：g。
b.用 96 孔板测定的计算公式如下
花色苷含量（µg/g 干重）=[ΔA×V÷（ε×d）×M×F×106
]÷W=33.4×ΔA× F÷W
V：提取液体积，1×10-3
L；ε：花色苷的摩尔消光系数，2.69×104
L / mol /cm；d：96 孔板光
径，0.5cm；M：花色苷的相对分子质量：449.2g/mol；F：稀释倍数；106：1g=106
µg；W：
样本干重：g。
注意：最低检测限为 0.2μg /g 干重